维普资讯 http://www.cqvip.com 中国矫形外科杂志2002年6月第9卷第7期Orthop J Chin,Vo1.9,No.7 June 2002 组织工程用山羊胫骨骨缺损模型的制备△ 王摘要珂裴国献陈 滨 金丹魏宽海胡罢生 马中立 目的:制备骨组织工程用中国青山羊胫骨骨缺损模型。方法:中国青山羊9只随机分3组制备单侧胫骨20ram的骨膜与骨 缺损,钢板内固定,术后放射性同位索、放射学检查、组织学方法评价骨缺损自行修复情况。结果:术后同位素ROI记数(P>O.05)与摄 取比值T小rr(P>0.05)显示无骨代谢,所有动物骨缺损处x线片Lane评分均为0分,组织学显示无骨组织长人。结论:山羊胫骨 20mm缺损模型不能自主成骨,符合骨组织工程实验的要求。 关键词羊;骨缺损;模型 R《谗3.42 文献标识码A 文章编号lo05—8478(2oo2)O7一o664一O3 中图分类号Preparation of all Experimental Chinese Caprine Model of Tibia Diaphyseal Defect Used in Ti ̄llie Ene ̄aecring,,WANG Ke.}}EI Guo-xian,CHEN Bin,et a1.Departnwnt of Orthopedics aim Traumatology,Nanfang Hospital,丁^ First Military Medical University, GM,2 ;妫o“,Cozangdong 510515 Abstract Objectire:To prepare an experimental caprine model of tibia bone defect used in tissue engineering.Metlmds:1’he nine Chinese caprines were divided into three groups.The 20mm left tibia diaphyseal defect of every caprine was made of and fixed with plate.Bone formation nd ablood supply were evaluated by ECT.X-ray nd hiastology.Results:1’he numbers 0f R0I and the ratio 0fT showed no bone metaholism. The Lane’s scores of nine caprines were all zero.There was not Ixme found in histology.Conclusion:Caprine model of 20mm tibia diaphyseal de. fect cannot be repaired by itself and can satisfy the ti ̄ue engineenng’S demands. Key words Caprine; Bone defct;e Animal model 骨组织工程动物实验所用的骨缺损模型有大体动物和小 个体动物之分。常用的小个体动物模型是新西兰大白兔的桡 干长度、中段横径,算出除去放大率后实际值。 1.2.2手术方法动物骨缺损模型的制备与内固定相同,操 作由同一组人员完成。3%戊巴比妥钠静脉麻醉并维持,备 皮,消毒,铺单。下肢前外侧弧形切开皮肤、皮下,分开胫前肌 骨中段10ram以上骨与骨膜缺损的模型Ll、2 J,虽然有不需内固 定等优点,但也存在着成骨量少、与实际修复骨缺损环境差距 较大的不足。常用大体动物羊、狗的股骨、胫骨的洞缺性或段 缺性骨缺损模型中,文献报道骨缺损范围、固定形式等条件不 统一。为此,本实验用中国青山羊按临床常用的钢板固定制 与胫骨间隙,保护胫前血管,游离胫骨中段,骨膜与周围软组 织分离,保护周围组织。设计将钢板放置于胫骨外侧、胫前肌 的下面,于放置钢板的位置纵行切开骨膜,适当剥离后于胫骨 备了胫骨段缺性骨缺损的模型,报告如下。 1材料与方法 1.1材料 外侧放置塑形好的AO自动加压7孔钢板,钢板上端距胫骨结 节15mm,空出第4孔,其余孔螺丝钉固定,不拧紧。在钢板第 3、5孔之间,即距离胫骨结节45mm、67mm处线锯锯断胫骨和 骨膜,紧固螺丝钉加压,造成20mm骨与骨膜缺损,逐层关闭。 切口无菌绷带包扎,不做外固定。术后常规换药,1周内肌注 青霉素80万 /d,常规高蛋白青饲料圈养,术后14d拆线,无异 常后放养,自由活动。 1.3放射性同位素检查 GCA-901/SA发射型断层扫描仪(ECT),配低能高分辨准 1.1.1实验动物健康中国青山羊9只,由第一军医大学实 验动物中心提供,12月龄,体重14.5~15.5kg,雌雄不限,雄 性未去势。随机分3组,每组3只,每只羊做单侧肢体。 1.1.2固定材料7孔AO自动加压钢板,螺丝钉直径2. 5ram(常州康辉医疗器械公司生产)。 1.2方法 1.2.1术前准备动物于术前拍双侧胫骨X线片,测量胫骨 直器检测。3组分别术后2、4、8周肌注速麻安0.05ml/kg麻 醉后,静脉注射 .MDP5毫居/10kg,4h后以l帧/Stain采 集一幅静态显像,为延迟相。能峰140key,窗宽20%,矩阵512 △基金项目:国家基础研究发展规划(973)项目(G1999054309) 作者单位:第一军医大学南方医院骨科全军创伤骨科中心,广东广 州510515 ×512,缩放1.0。感兴趣区(R0I)同位素记数并计算与对侧的 比值(T/NT)。 作者简介:王珂(1971.),男,第一军医大学在读硕士研究生,主治医 师。研究方向:骨组织工程。电话:(020)85141744 1.4放射学检查 所有动物术后4、8、l2周均拍手术肢体正侧位X线片。 维普资讯 http://www.cqvip.com 中国矫形外科杂志2002年6月第9卷第7期Orthop J Chin,Vo1.9,No.7 June 2002 ・665・ 肌注速麻安0.05ml/kg,麻醉后固定,条件: FOSHIBA的KXO— l5R型X线机,电压55kV,电流55nL ̄、暴光时间0.3S,焦距 90cm。所有片子用骨缺损Lane 13』标准评分,对骨缺损自身的 修复进行量化分析。 1.5组织学检查 观察时相点为术后4、8、l2周。取骨缺损部标本,体积分 数l0%的中性固定,EI)TA脱钙,酒精逐级脱水,二 甲苯透明,HE染色。观察骨缺损自行修复成骨情况。 1.6统计分析 3组的ROI记数与摄取比值T T用方差分析。 2结果 2 1胫骨长度与横径 共l8侧肢体,胫骨长度范围为(126±I1)nml、横径(1l± 1)nm1 2.2一般情况 实验动物除一只因术前麻醉过量死亡已予补充外,其余 均存活。术后2~6h苏醒,并能站立进食。术后切口无感染, 无内固定松动失败,皮肤无坏死。术后1周内伤肢能落地,但 不能负重,2周后可以部分负重,3周有轻微跛行,4周后能自 由活动,无跛行。 2 3放射性同位素检查 术后2、4、8周3组的It0I i 数与摄取比值见表l,不同时 间ROI记数之问(P>0.05)及摄取比值之问(P>0.1)无显著 差异,摄取比值均小于1,说明术侧骨缺损区血供少,无成骨表 现 、 表1 术后2、4、8周各组ROI记数与摄取比值(n=3。 s) P>0.05: P>0.1 2.4放射学检查 术后4周所有动物骨缺损处均未见有密度增高,远近断 端模糊,有少许骨膜反应,Lane评分均为0分;术后8周无骨 形成,断端有硬化,髓腔开始有闭合迹象,骨缺损处无密度增 高, e评分0分;术后l2周见骨缺损处与4、8周相比无密 度增高,断端硬化、闭合,残端骨膜反应未加重,Lane评分0 分。 2.5组织学检查 术后4周远近端切片有新生骨痂出现,量少,不规则。骨缺 损处切片见大量结缔组织,未见骨样组织形成;术后8周断端 骨痂量未见增多,骨痂内有骨小梁形成,骨缺损处仍充填大量 结缔组织,无骨组织形成;术后l2周断端骨小梁减少,有密质 骨形成,骨缺损处结缔组织致密,无骨组织。 3讨论 . 3.1大动物段缺性骨缺损模型在骨组织工程中的重要性 骨组织工程动物实验中骨缺损模型有多种。按骨缺损的 类型分洞缺性骨缺损和段缺性骨缺损.前者有长骨、高骨和不 规则骨的骨与骨膜缺损,后者是长骨的骨与骨膜缺损;按动物 体积分:羊、狗、猪是常用的大动物,鼠、兔是常用的小动物。 鼠、免的颅骨洞缺性骨缺损模型与兔尺、桡骨段缺性骨缺损模 型在临床前动物实验中是最常用的。狗、猪的下颌骨或股骨 洞缺性骨缺损模型可以在一侧骨上做多个缺损模型,以上模 型均可以用大样本实验,易于统计分析,骨缺损部位不需内固 定,简化了实验操作,减少了影响因素与误差。 以上模型仍难满足临床实验要求,具体表现为成骨量少、 与临床实际不相符。临床发生率较高骨缺损是负重或应力集 中部位的管状骨的大段段缺性骨缺损,多由创伤、感染造成, 治疗难度 。近期发展起来的骨组织工程是将自体种子细 胞体外扩增后与生物材料复合,植入骨缺损部位修复骨缺损, 在理论上是该类型骨缺损修复的最理想治疗模式。从临床的 角度出发,对骨组织工程修复该类型骨缺损的动物模型要求: ①骨缺损量要大;②相似的软组织与力学环境;③考虑内外固 定影响。目前一些骨组织工程研究对成骨量小的模型能得到 比较理想的结果,在成骨量较大的模型上结果不理想,这是因 为种子细胞体外培养的时间短,本身成骨潜能易于保持,如用 于大量骨缺损修复,要求成骨量大,为达到一定数量,种子细 胞的体外培养时间将增加,成骨能力会降低_5 J。洞缺性骨缺 损与段缺性骨缺损的生物力学环境是不同的,段缺性骨缺损 的轴向应力会影响新骨的形成,而洞缺性骨缺损缺乏应力的 刺激。按目前技术,较大骨缺损修复后的固定仍必须依靠内 外固定,要考虑不同固定材料、方式与生物材料种子细胞的 相互影响。因此,大体动物长管状骨的段缺性骨缺损模型是 与临床实际最相符合的模型。 3.2骨缺损模型选择的部位、长度、固定 中国青山羊与狗、猪相比具有易于管理、检测,四肢骨较 长,操作方便等优点,国内外大多采用山羊。山羊股骨与胫骨 都可以用作骨缺损模型,胫骨更符合要求,临床上骨缺损常伴 有周围软组织损伤,血供不充分,因而骨缺损模型不宜在局部 血供丰富的股骨制备,而羊胫骨上段有1/3无肌肉包围,直接 位于皮下,中下段达到l,'2--2/3,是比较合适的部位。 羊胫骨骨缺损制备的长度报道不一,根据羊种属、研究目 的等不同有30--50n ‘6, 。还要考虑多个因素:①骨缺损不 能自行愈合;②羊的年龄与个体大小;③骨缺损量的比例;④ 内固定因素。目前羊胫骨缺损不能自行愈合的长度尚无文献 报道,缺损长度增加将带来固定困难、实验观察期延长等一系 列问题。采用l2月龄、体重l4.5~15.5kg之问中国青山羊, 胫骨中段距胫骨结节45rmn处按羊肢体长度与钢板长度制备 20mm骨与骨膜缺损,7孔AO自动加压钢板固定。术后8周 内放射性同位素检测显示术侧的ROI放射记数无显著差异, 摄取比值均小于l,说明成骨与血供少于正常侧,无早期成骨 表现。l2周内的x线与组织学检查都证实20mm缺损对于羊 是不能自行愈合的,l2周后髓腔几近闭合,更无愈合的可能。 放置钢板是为将骨缺损处空出,充填生物材料种子细胞复合 物。倘用髓内针将占据骨缺损位置,用外固定架不便于术后 管理,都不合适。经测量胫骨的长度(126±l1)rflill,中段横径 维普资讯 http://www.cqvip.com ・666・ 中国矫形外科杂志2002年6月第9卷第7期Orthop J Chin,Vo1.9,No.7 June 2002 (11±2)rr ̄,7孔AO自动加压钢板长度为93mm,完全可以在 不影响胫骨上下关节的情况下放置在胫骨干皮质段的外侧, 塑形后与胫骨干能很好的贴服。钢板第4个孔空置,第3孔远 【2 J Hollinger JO.Kleinsehmidt JC.The critical size defect as an experi. ment ̄model to test bone repair materials[j].j Craniofac Surg, 1990,1(1):60--68. 端与第5空近端之间的距离足以跨越20mm的骨缺损,不影响 相邻螺孔的固定,远近截骨端与钢板远近端的长度各有 35nma,3个螺钉固定,这样就构成了符合AO要求的桥形钢 [3]Lane JM,Scandhu HS.Current approaches to experimental bone grafting[J].Orthop C1in North Am,1987,l7:2l3~2l5. [4]许兢斌.骨缺损.见:陆裕朴,主编.实用骨科学[M].北京:人民军 医出版社,1997,1:64. [5]Banff A,Muraglia A,Dozin B,et a1.Proliferation kinetics and differ. ntieation potential of ex vivo expanded human bone Blal'row strornal 板 J,本实验按此制备的6例20mm骨缺损模型及随后的多 例模型中,均未发生内固定失败。预实验中对30mm以上缺 损用同样的内固定均失败。由于羊胫骨中段无明显的骨性标 cells:Implicat ̄ns for their use in cell therapy[j].Exp-Hematol, 2000,28(6):707--715. 志,先截骨后固定很容易发生旋转与分离、短缩移位,本实验 先在完整胫骨上固定钢板,后截骨,考虑自动加压产生的短缩 移位,截骨时预留2mm,最后紧固。 本实验模型确定了实验动物一般情况、操作细节,尽可能 的减少了误差,具有可操作性、可重复性,是检验骨组织工程 中生物材料/种子细胞复合物成骨能力较好的模型。 参考文献: (1]Giardino R,Fini M,Nicoli Aldini N,et al,Polylactide bioabsorbable [6]Den Boer FC.Patka P,B<qkker FC,et a1.New segrnent ̄long bone defect model in sheep:quantitative analysis of healing with dual ener- gy x.ray absorptiometry[J].j Orthop Res,1999,17(5):654--660. [7] Stutzle H,HallfeldtK,MandelkowH,et a1.Bone regeneration stimu— latd eby bone substitutematerialsOrthopade[J].1998,27(2):1l8~ 125. 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